Practica No.3 Tecnicas microbiologicas.

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO

"LIC.JULIAN DIAZ ARIAS"

SUBMODULO III.

INTEGRANTES:

ADRIAN CORTES HERNANDEZ

MARIA FERNANDA RODRIGUEZ VAZQUEZ

IDALI ROJAS HERNANDEZ

YESENIA SANCHEZ GONZALEZ

GABRIELA ZEPEDA CASTAÑEDA.

EQUIPO No.3.

TECNICAS MICROBIOLOGICAS. (Parte 2).





OBJETIVO: Observar las diferentes morfologias de moho.




MATERIAL:

1. 3 cubre objetos.




2. 3 porta objetos.




3. asa de inocular.




4. mechero bunsen.




5. microscopio.




6. piseta.

COLORANTES:

1. fenoftaleina




2. azul algodon




3. fucsina finicada




4. violeta de genciana




5. azul de metileno




6. naranja de metilo.

PROCEDIMIENTO:

Se coloco el asa de inocular al fuego hasta obtener esterilizacion de ella (al rojo vivo).

1. Dejar enfriar.




2. Tomar la muestra (moho).




3. Extenderla en el porta objetos con una gota de agua.




4. Secar a fuego con una altura determinada.




5. Ya seco y frio colocar el colorante.




6. Nuevamente secar a fuego, dejar enfriar y observar al microscopio.




7. Anotar observaciones.




8. Repetir el procedimiento con los colorantes restantes.

OBSERVACIONES:

Naranja .

jitomate:

Practica No.5 Soluciones normales.

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO

"LIC.JULIAN DIAZ ARIAS"

SUBMODULO II. ANALISIS CUANTITATIVOS.

EQUIPO

No.3

INTEGRANTES:

ADRIAN CORTES HERNANDEZ

MARIA FERNANDA RODRIGUEZ VAZQUEZ

IDALI ROJAS HERNANDEZ

YESENIA SANCHEZ GONZALEZ

GABRIELA ZEPEDA CASTAÑEDA

SOLUCIONES NORMALES

Son las que tienen el equivalente quimico en un litro de solucion.

OBJETIVO: Establecer la normalidad de una solucion en un litro.
MATERIAL:

1. 1 bureta
2. pinzas doble nuez
3. pinzas para bureta
4. 2 vasos de precipitado
5. 2 matracez volumetricos aforados
6. 1 pipeta
7. perilla
8. piseta
9. soporte universal
10. vidrio de reloj
11. balanza granataria

REACTIVOS:

1. carbonato de sodio
2. hidroxido de sodio
3. hidroxido de bario
4. fenoftaleina
5. fucsina finicada

PROCEDIMIENTO:

1. Sacamos el peso equivalente quimico.
2. Posteriormente se multiplico por la molaridad dada (5).
3. Luego a la ecuacion dada se realizo un despeje.
4. Sacamos los gramos necesarios.
5. Los gramos se disolvieron en 100 ml de agua.
6. Se tomo 5 ml de la muestra 1 (acido).
7. Se puso en el matraz volumetrico aforado.
8. El carbonato de sodio se virtio en la bureta.
9. Se virtio el carbonato de sodio a la muestra midiendo la cantidad gastada, poniendo a la muestra uno, 3 gotas de fenoftaleina hasta obtener el color solicitado o deseado.
10. Repetir el procedimiento con los reactivos restantes.
11. Con los reactivos hidroxido de sodio y de bario realizarlo pero con gotas de fucsina.
12. Realizar observaciones.

OBSERVACIONES:

carbonato de sodio

Yesenia 10 gotas cantidad gastada 2 ml.

Gabriela 11 gotas cantidad gastada 2.1 ml.

Raymundo 16 gotas cantidad gastada 3 ml.

hidroxido de sodio

Fernanda cantidad gastada 8 ml.

Adrian cantidad gastada 5.5 ml.

Yesenia cantidad gastada 3.7 ml.

Idali cantidad gastada 3.1 ml.

Raymundo cantidad gastada 2.9 ml.

hidroxido de bario

Adrian cantidad gastada 5 ml.

CONCLUSIONES:

Dependiendo del reactivo la cantidad utilizada es diferente.

submodulo 3 practica 2"observacion de moho "

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO "LIC.JULIAN DÍAZ ARIAS"

EQUIPO 3

INTEGRANTES:

CORTES HERNANDEZ ADRIAN

GUTIERREZ ALBARRAN RAYMUNDO

RODRIGUEZ VAZQUEZ MARIA FERNANDA

ROJAS HERNANDEZ IDALI

SANCHEZ GONZALEZ YESENIA

ZEPEDA CASTAÑEDA GABRIELA

OBJETIVO:
Observar las diferentes formas de los moho en los distintos alimentos.
MATERIAL:
-moho (naranja, tortillas,o frutas)
-microscopio
-naranja de metilo
-azul de metilo
-azul algodon
-cubre objetos
-porta objetos
PROCEDIMIENTO:
En un porta objetos ponerle una gota de agua agregar el moho y secarlo a calor(mechero) despues agregarle una gota de algun indicadort del color que se desee secarlo a calor(mechero)y esperar hasta que se enfrie ponerlo al mechero y observar la colortacion con los diferentes colores de indicadores.
repetir el procedimiento con los moho con los que se encuentre


MOHO:
Hongo que se encuentra tanto al aire libre como en interiores.

PRACTICA Nº4 "observación de muestras fósiles"

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO

"LIC,JULIÁN DÍAZ ARIAS"

PRACTICA DE LABORATORIO

PROFESORA

BEATRIZ LARRAURÍ RANGEL

EQUIPO Nº 3

INTEGRANTES:

CORTES HERNÁNDEZ ADRIAN

GUTIERRREZ ALBARRAN RAYMUNDO

RODRIGUEZ VAZQUEZ MARÍA FERNANDA

ROJAS HERNÁNDEZ IDALI

SÁNCHEZ GONZÁLEZ YESENIA

ZEPEDA CASTAÑEDA GABRIELA

OBJETIVO:

Distinguir la morfología de los diferentes tipos de fósiles encontrados en las diferentes capasde la tierra que constituyen el gran pasado geológico de ella.

MATERIAL:

Fósiles a observar.

trilobiteshencrinusvenus tylocidaris stauronema sagenocrinites rynchonella quercussauvagesia pecten helechosrynchonella cruziana graptolites aspidiscus productusphacopssiplomistospotamides planorbis nummulites heteraster paleocasto fraxinusmichilinoceras lepidodendreon ciploctenium exogira dentalium conocoryphe ceratites aspidiscus

FÓSILES:

Restos o señales de la actividad de organismos pesados como conchas , caparazones y esqueletos conservados en piedras sedimentarias.

Practica No.2.Tecnicas microbiologicas.

OBJETIVO: Determinar la tecnica adecuada para observar tinciones de hongos.

MATERIAL:

1. 3 portaobjetos




2. 3 cubreobjetos




3. microscopio




4. asa de inocular




5. materia organica en descomposicion




6. colorantes (fucsina finicada, azul de algodon,violeta de genciana y azul de metileno)

PROCEDIMIENTO:

1. Colocar el asa de inocular al mechero hasta observarla al rojo vivo, retirarla y dejarla enfriar.




2. Tomar diferentes muestras de hongos de la materia organica con la ayuda de la asa de inocular.




3. Fijar la muestra en el portaobjetos y secarla.




4. Despues de ello, colocarle el respectivo color a cada una.




5. Secarla nuevamente y observar al microscopio.




6. Realizar anotaciones.

Practica No.1.Analisis fisicos y quimicos aplicados al agua potable.

OBJETIVO: Observar detenidamente el agua para su estudio y realizar registro de datos de su analisis.

MATERIAL:

1. Densimetro
2. Termometro
3. Papel pH
4. 4 vasos de precipitado
5. 4 muestras diferentes de agua (tinaco,pozo,laboratorio,baño)

INDICADOR: Naranja de metilo.

PROCEDIMIENTO:

1. Determinar con la ayuda del termometro la temperatura de las diferentes muestras de agua.
2. Determinar la densidad y el olor del agua.
3. Determinar la alcalinidad o acidez con papel pH del agua.
4. Determinar la coloracion de agua con el indicador (naranja de metilo).
5. Realizar anotaciones.

OBSERVACIONES:

MUESTRA TEMPERATURA PH COLOR DENSIDAD OLOR INDICADOR

Tinaco 17º C 5 pH Turbia 1.1 ligero a cloro 4 gotas

Pozo 17º C 6 pH Turbia 1.0 tierra 7 gotas

Laboratorio 17º C 5 pH Turbia 1.0 ligero a cloro 4 gotas

Baño 17º C 6 pH Turbia 1.0 ligero a cloro 6 gotas

CONCLUSIONES:

De acuerdo a los datos obtenidos, se puedo analizar que las muestras requieren de estrictos analisis ya sean aplicados quimicamente o fisicamente.El registro veridico de observaciones es fundamental para su analisis aplicado.

OBJETIVO: Identificar el porcentaje en gramos de una solucion.
MATERIAL:

Balanza granataria.
Espatula.
Piseta.
Matraz volumetrico de 100 ml.
REACTIVOS:
Cloruro de sodio.
Carbonato de sodio.
PROCEDIMIENTO:
Calcular los gramos necesarios para preparar una solucion al 5% peso a peso en 100 ml de agua con los dos reactivos a utilizar.
Realizar otra concentracion al 3% de los dos reactivos en 50 ml de agua.
Realizar las correspondientes formulas para el porcentaje de los reactivos.
Pesar la probeta.
Pesar el respectivo porcentaje de los reactivos.
Disolver el porcentaje de reactivo en el matraz volumetrico con la ayuda del agitador.
Con la ayuda de la probeta medir el aumento de los reactivos diluidos en agua con respecto a los diferentes porcentajes.
Anotar observaciones.
OBSERVACIONES:
PESO DE LA PROBETA: 211.7 grs.
CLORURO DE SODIO AL 5%: 318 grs.
CLORURO DE SODIO AL 3%: 316 grs.
CARBONATO DE SODIO AL 5%: 321 grs
CARBONATO DE SODIO AL 3%: 316 grs
CONCLUSION:
que la densidad aumenta de acuerdo a los porcentajes a utilizar en las diferentes soluciones mas si se refiere a acidos.
¿COMO SE COMPRUEBA EL MARGEN DE ERROR?ERROR DE MEDICIONERROR ABSOLUTO DE LA PROBETA Y DEL BEAKEREa = O - VEa probeta = 31 - 50 Ea beaker = 31-31Ea probeta = - 19 Ea beaker = 0Ea probeta = 19 Ea beaker = 0ERROR RELATIVO DE LA PROBETA Y DEL BEAKEREr = O-VVEr probeta = 31-50 Er beaker = 31-3150 31Er probeta = 0.38 ml Er beaker = 0 mlPORCENTAJE DE ERROR DE LA PROBETA Y DEL BEAKERE % = O-V *100VE % probeta = 31-50 * 100 E % beaker = 31-31 * 10050 31

Practica No.1Diluciones.

OBJETIVO: Identificar la cantidad de colorantes en diluciones.
MATERIAL:

1. 8 tubos de ensayo.
2. 5 colorantes artificiales (diferentes).
3. 1 probeta de 100 ml.
4. 1 pipeta de 10 ml.
5. 1 perila.
6. 1 gradilla.
7. 1 agitador.
8. 1 matraz volumetrico.

PROCEDIMIENTO:

1. Se disolvio 0.5 gr de colorante en 100 ml de agua.
2. Poner 1 ml de solucion en un tubo de ensayo y agregar 7 ml de agua.
3. Tomar 1 ml de solucion del tubo anterior.
4. Realizar el mismo procedimiento hasta que el color se diluya totalmente.

OBSERVACIONES:

Colorante verde-se diluyo a la 8 menos 7.

Colorante naranja-se diluyo a la 8 menos 3.

Colorante lila-se diluyo a la 8 menos 3.

Colorante azul-se diluyo a la 8 menos 3.

Colorante amarillo-se diluyo a la 8 menos 2.

CUESTIONARIO.

¿Cual se diluyo mas rapidamente?

Fue la solucion realizada con el colorante amarillo.

¿Cual se diluyo menos?

Fue la solucion realizada con el colorante verde.